Antikörper mAB

Monoklonale Antikörper (mAb´s) sind immunologisch aktive Proteine, die in den letzten Jahren in zunehmenden Maße in den Fokus der medizinischen Forschung gerückt sind. Heutzutage bestehen bereits eine Vielzahl moderner Pharmaka und Therapieansätze, die auf monoklonalen Antikörpern basieren

 

Die Analytik von monoklonalen Antikörpern hat meist zum Ziel Monomere von Dimeren, Trimeren und weiteren Aggregaten abzutrennen, da diese die Effektivität von Biopharmazeutika negativ beeinflussen können. Weiterhin lassen sich auch verschiedene Fragmente von mAb´s analysieren, z. B. Fc– oder  Fab-Fragmente. Die Analytik von monoklonalen Antikörpern kann mit unterschiedlichen chromatographischen Trenntechniken durchgeführt werden.

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Applikationen

1. Größenausschlusschromatographie (SEC) mit Tosoh TSkgel SuperSW mAb HR

Die SEC ist eine sehr geeignete und breit angewendete Methode für die Bestimmung von Aggregat-, Monomer- und Fragment-Gehalten von mAb´s in Analytlösungen.

Peakidentitäten

Dimer, Monomer und Fragmente von IgG

Testbedingungen

Säule: TSKgel SuperSW mAb HR 300x7.8mm

Mobile Phase: 200 mmol/L Phosphatpuffer + 0.05% NaN3, pH 6.7

Flussrate: 1 mL/min

Probe: 10 g/L IgG verdaut mit Papain für 0-24 h

Injektionsvolumen: 10 µL

Temperatur: 25 °C

Detektion: UV, 280 nm

2. Hydrophobe Interaktionschromatographie (HIC) mit Tosoh TSKgel Butyl-NPR

Die Trennung bei der Hydrophilen Interaktionschromatographie basiert auf der unterschiedlichen Oberflächenhydrophobizität von verschiedenen Proteinen. Ist dies für die jeweiligen Analyten gegeben, so lassen sich mittels HIC verschiedene Antikörper voneinander trennen, Antikörper von anderen Proteinen abtrennen aber auch Antikörperaggregate von Monomeren separieren. Die Trennung von Antikörperfragmenten ist ebenfalls möglich.

Peakidentitäten

Fragmente und Aggregate von MAb

Testbedingungen

Säule: TSKgel Butyl-NPR 35x4.6mm

Mobile Phase A: Puffer mit 3 M NaCl und 10 mM Natriumphosphat, pH 7

Mobile Phase B: 10 mM Natriumphosphat, pH 7

Gradient: 0% - 100% B in 25min

Flussrate: 1 mL/min

Detektion: Fluoreszenz

Probe: 2 µg Protein

3. Ionenaustauschchromatographie mit Tosoh TSKgel SP-STAT und CM-STAT

Mit Ionenaustauschchromatographie lassen sich verschiedene Ladungsvarianten von Antikörper, –Fragmente, –Aggregate und weitere Proteine voneinander trennen. Die verschiedenen Ladungsvarianten entstehen durch die Deamidierung von Asparagin oder Glutamin Resten oder durch unvollständigen Entfernung des C-Terminus von Lysin Resten.

Peakidentitäten

Trennung von Ladungsvarianten eines MAbs

Testbedingungen

Säulen: TSKgel SP-STAT 100x4.6mm, 7µm

             TSKgel CM-STAT 100x4.6mm, 7µm

Mobile Phase A: 10 mM/L Natriumphosphat Puffer, pH 7

Mobile Phase B: 100mM/L Natriumacetat Puffer, pH 7

Gradient: 0% - 100% B in 30 min

Flussrate: 1 mL/min

Injektionsvolumen: 10 µL

Detektion: UV, 280 nm

Probe: MAb 2 g/L

4. Reversed-Phase Chromatographie mit AMT HALO 1000Å C4

Auch mittels der Reversed-Phase Chromatographie lassen sich unterschiedliche monoklonale Antikörper analysieren.

Testbedingungen

Säule: HALO 1000Å C4 100x2.1mm, 2.7µm

Mobile Phase A: Wasser, 0.1% TFA

Mobile Phase B: 80/20 Acetonitril/Wasser, 0.085% TFA

Gradient: 40% - 47.5% B in 12 min

Flussrate: 0.4 mL/min

Druck: 210 bar

Temperatur: 80 °C

Injektionsvolumen: 2 µL

Probenlösungsmittel: 70/30 Wasser/Acetonitril

Detektion: UV, 280 nm

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